Medicinska Bilder, TSBB31. Lab6: Mätningar på SPECT/CT-volymer

Relevanta dokument
Medicinska Bilder, TSBB31. Lab7: Mätningar på SPECT/CT-volymer

Medicinska Bilder, TSBB31. Lab3: Mätvärden på Medicinska Bilder

Medicinska Bilder, TSBB31. Lab: Mätvärden på Medicinska Bilder

Medicinska Bilder, TSBB31. Lab: Mätvärden på Medicinska Bilder

Flerdimensionella signaler och system

Signal- och Bildbehandling, TSBB14. Laboration 2: Sampling och rekonstruktion. DFT.

Medicinska bilder. Programkurs 6 hp Medical Images TSBB31 Gäller från: 2018 VT. Fastställd av. Fastställandedatum

Lab 1: Operationer på gråskalebilder

MR-laboration: design av pulssekvenser

Simulering med ModelSim En kort introduktion

Bildbehandling i spatialdomänen och frekvensdomänen

Laboration 2: 1 Syfte. 2 Väntevärde och varians hos en s.v. X med fördelningen F X (x) MATEMATISK STATISTIK, AK FÖR BYGG, FMS 601, HT-08

MMA132: Laboration 2 Matriser i MATLAB

Histogramberäkning på en liten bild

Försättsblad till skriftlig tentamen vid Linköpings Universitet

TSKS21 Signaler, Information och Bilder Lab 2: Digitalisering

DICOM MPPS/dos- SR Vad gäller?

TAIU07 Matematiska beräkningar med Matlab

Datorövning 1 Fördelningar

TANA17 Matematiska beräkningar med Matlab

Instruktion för laboration 1

Syftet med den här laborationen är att du skall bli mer förtrogen med följande viktiga områden inom matematisk statistik

TSBB14 Laboration: Intro till Matlab 1D

Projekt 2 (P2) Problembeskrivning och uppdragsspecifikation

TEM Projekt Transformmetoder

Tillämpad digital signalbehandling Laboration 1 Signalbehandling i Matlab och LabVIEW

Laboration 4: Stora talens lag, Centrala gränsvärdessatsen och enkla punktskattningar

Instruktion för laboration 1

Laboration: Grunderna i Matlab

TANA17 Matematiska beräkningar med Matlab

Lösning till tentamen i Medicinska Bilder, TSBB31, DEL 1: Grundläggande 2D signalbehandling

Datorövning 2 Matlab/Simulink. Styr- och Reglerteknik för U3/EI2

Miniprojekt: Vattenledningsnäten i Lutorp och Vingby 1

SF1911 Statistik för bioteknik: Autumn 2016 Lab 3 för CBIOT3. 1 Problem 1 - Fördelning av nukleotider i DNA

Signal- och Bildbehandling, TSBB14. Laboration 2: Sampling och Tidsdiskreta signaler

1) Automatisk igenkänning av siffror. Miniprojektuppgifter ppg för Signal- och Bildbehandling. av siffror. Klassificering av virusceller.

Signal- och bildbehandling TSBB03

TAIU07 Matematiska beräkningar med Matlab

Laboration 2. Grafisk teknik (TNM059) Digital Rastrering. S. Gooran (VT2007)

Laboration 4: Stora talens lag, Centrala gränsvärdessatsen och enkla punktskattningar

Signal- och bildbehandling TSBB03

Introduktion till Matlab

Datorövning 1 Introduktion till Matlab Fördelningar

Datorövning 1: Fördelningar

Nuklearmedicin, vad är det? Hur fungerar en gammakamera? Anna Olsson Sjukhusfysiker Nuklearmedicin

Ansiktsigenkänning med MATLAB

SF1900 Sannolikhetsteori och statistik, HT 2017 Laboration 1 för CINEK2

Lösning till tentamen i Medicinska Bilder, TSBB31, DEL 1: Grundläggande 2D signalbehandling

Laboration i Fourieroptik

TDDC74 Lab 04 Muterbara strukturer, omgivningar

Simulering med ModelSim En kort introduktion

Beräkningsverktyg HT07

SF1905 Sannolikhetsteori och statistik: Lab 2 ht 2011

Laboration i tidsdiskreta system

Datorövning 1: Fördelningar

TANA17 Matematiska beräkningar med MATLAB för M, DPU. Fredrik Berntsson, Linköpings Universitet. 9 november 2015 Sida 1 / 28

Lösning till tentamen i Medicinska Bilder, TSBB31, DEL 1: Grundläggande 2D signalbehandling

Spektrala transformer Laboration: JPEG-kodning

Bildbehandling i frekvensdomänen

TANA17 Matematiska beräkningar med MATLAB för M, DPU. Fredrik Berntsson, Linköpings Universitet. 2 november 2015 Sida 1 / 23

Tentamen TANA17 Matematiska beräkningar Provkod: DAT1 Godkänd: 8p av totalt 20p Tid: 21:a April klockan

Signal- och bildbehandling TSBB14

Laboration 1. Grafisk teknik (TNM059) Introduktion till Matlab. R. Lenz och S. Gooran (VT2007)

Signal- och Bildbehandling, TSBB14 Laboration 1: Kontinuerliga signaler

Signal- och bildbehandling TSEA70

Poisson Point Processes. Edvin Listo Zec Maja Fahlén

Signal- och bildbehandling TSBB14

Matematisk statistik allmän kurs, MASA01:B, HT-14 Laborationer

Bildbehandling, del 1

Mer om funktioner och grafik i Matlab

Faktorisering med hjälp av kvantberäkningar. Lars Engebretsen

Introduktion till Matlab

Signaler, information & bilder, föreläsning 15

Laboration: Grunderna i MATLAB

ATT RITA GRAFER MED KOMMANDOT "PLOT"

KPP053, HT2016 MATLAB, Föreläsning 3. Plotter och diagram Läsa och skriva data till fil

Matematisk analys för ingenjörer Matlabövning 2 Numerisk ekvationslösning och integration

repetera begreppen sannolikhetsfunktion, frekvensfunktion och fördelningsfunktion

TNM059 Grafisk teknik Laboration 4 - Färg

Matematikcentrum 1(6) Matematisk Statistik Lunds Universitet MASB11 - Biostatistisk grundkurs VT2014, lp3. Laboration 2. Fördelningar och simulering

Projekt 6. Fourieroptik Av Eva Danielsson och Carl-Martin Sikström

Laboration 1. Grafisk teknik Rastrering. Sasan Gooran (HT 2004)

Department of Physics Umeå University 27 augusti Matlab för Nybörjare. Charlie Pelland

Försättsblad till skriftlig tentamen vid Linköpings universitet G34

Datorlaboration 7. Simuleringsbaserade tekniker

Telemedicin. Telemedicin. Historia, del 1. Erik. Vag term, inte så populär längre.

M0043M Integralkalkyl och Linjär Algebra, H14, Matlab, Föreläsning 1

Lösning till tentamen i Medicinska Bilder, TSBB31, DEL 1: Grundläggande 2D signalbehandling

Signal- och bildbehandling TSEA70

Funktioner och grafritning i Matlab

Lösning till tentamen i Medicinska Bilder, TSBB31, DEL 1: Grundläggande 2D signalbehandling

Försättsblad till skriftlig tentamen vid Linköpings Universitet

Fig. Exempel på en B-mode ultraljudsbild av ett hjärta.

PC-teknik, 5 p LABORATION ASSEMBLERINTRODUKTION

Index. Vektorer och Elementvisa operationer. Summor och Medelvärden. Grafik i två eller tre dimensioner. Ytor. 20 januari 2016 Sida 1 / 26

Faktorisering med hjälp av kvantberäkningar. Lars Engebretsen

CTH/GU LABORATION 1 MVE /2013 Matematiska vetenskaper. Mer om grafritning

Laboration 1 Introduktion till Visual Basic 6.0

Bose-Einsteinkondensation. Lars Gislén, Malin Sjödahl, Patrik Sahlin

Laboration 3. Ergodicitet, symplektiska scheman och Monte Carlo-integration

Transkript:

Medicinska Bilder, TSBB31 Lab6: Mätningar på SPECT/CT-volymer Maria Magnusson, 2012-2016 Avdelningen för Datorseende Institutionen för Systemteknik Linköpings Universitet 1 Introduktion I denna laboration ska vi upprepa delar av en studie som finns beskriven i artikeln Quantitative lung-spect applied on a virtual model of human lungs with early COPD and humans with advanced COPD. Huvudförfattare är Pernilla Norberg på avdelningen för Radiofysik, institutionen IMH, Linköpings Universitet. Som Pernilla skriver är syftet med studien: Minskad ventilation i kronisk obstruktiv lungsjukdom (KOL), reflekteras som inhomogeniteter i single-photon emission computed tomography (SPECT) lungbilder och är korrelerade till sjukdomens utveckling. En analysmetod för att mäta dessa inhomogeniteter föreslås i detta arbete. Det första målet var att utveckla en kvantitativ analysmetod som kan skilja mellan Monte-Carlo simulerade lung- SPECT bilder med olika grad av inhomogeniteter. Det andra syftet var att utvärdera förmågan hos metoden att skilja mellan människor med avancerade KOL och friska försökspersoner. Vi ska implementera metoden enligt anvisningarna i artikeln och sedan testa den på en patient med KOL och en frisk försöksperson. Ni behöver inte testa metoden på de Monte-Carlo simulerade lung-spect bilderna. Under arbetet med metoden visade det sig att en av de förmodade friska försökspersonerna hade allergi och gav ett förhöjt mätvärde. Detta har inte varit känt tidigare. Denna person finns inte med i artikeln, men vi har tillgång till patientdata så att vi kan testa metoden även på denna person. 1

2 Förberedelser inför laborationen Läs igenom hela laborationshandledningen noggrant. Repetera den tidigare laboration Mätvärden på medicinska bilder. Där utvecklade vi flera användbara operationer i 2-D som vi kan återanvända i något modifierad form för 3-D. Notera t ex att då vi tidigare använde conv2 för faltning mm får vi nu använda convn istället. Läs igenom Pernillas artikel så att ni någorlunda förstår vad den handlar om. Lös förberedelseuppgifterna i lab-handledningen innan laborationstillfället! De är markerade med en pekande hand. 3 Laborationen 3.1 Start Laborationen kommer att ske i MATLAB. Den måste använda en MATLAB som är från 2012 eller senare. I MATLAB, ge följande kommando: addpath{ /site/edu/bb/medicinskabilder/spect ) Genom detta kommando får vi åtkomst till de SPECT- och CT-volymer som vi ska använda i labben. Kopiera filen /site/edu/bb/medicinskabilder/spect/spectprog.m till din hem-katalog och kör programmet. En lågdos CT-volym och en SPECTvolym av patienten P4 laddas, se Fig. 1, Fig. 2 och Fig. 3. MATLAB -programmet SPECTprog.m finns också i appendix. 128 128 CT volume 128 SPECT volume y, row x, col z (row,col,z)=(y,x,z) : horizontal slice : frontal slice Figur 1: Position av horizontell och frontal slice i CT- och SPECT-volymen. 2

CT, horizontal slice CT, frontal slice 0 100 200 300 0 100 200 300 Figur 2: Lågdos CT-volymen för patienten P4. SPECT, horizontal slice SPECT, frontal slice 0 100 200 300 400 500 0 100 200 300 400 500 Figur 3: SPECT-volymen för patienten P4. För SPECT-volymen har vi skapat färgtabellen jetmod, som är samma som jet, förutom att 0 visas som vitt: jetmod = jet; jetmod(1,:) = [1 1 1]; 3.2 Bearbetning av CT-volymen % make modified jet colormap Vad är en lämplig tröskel för CT-volymen enligt artikeln avsnitt Method for analysis of inhomogeneities? Multiplicera värdet med 1000 eftersom CT-volymen är multiplicerad med 1000. 3

En histogram av en bild visar fördelningen av bildens värden. Vi ska nu kontrollera att värdet i förberedelseuppgiften ovan är rimligt genom att beräkna histogrammet: binvect = [0:1:250]; ctvect = ctvol(:); histo = hist(ctvect, binvect); figure(21) subplot(1,1,1), plot(binvect, histo); title( CT histogram ) axis([1,250,0,50000]) Vektorn binvect ger centrumvärdena för histogrammets behållare och ctvect = ctvol(:) plattar ut CT-volymen till en lång vektor. Resultatet visas i Fig. 4. Notera att Pernilla använder orden frequency function för att beteckna ett histogram.. 5 x 104 CT histogram 4.5 4 3.5 3 2.5 2 1.5 1 0.5 0 50 100 150 200 250 Figur 4: Histogram ( frequency function ) för CT-volymen. Motivera varför tröskelvärdet är bra genom att referera till histogrammet. Tröskelsätt CT-volymen. Det görs med kommandot: ctvolbin = (ctvol < T); där T är tröskelvärdet. ctvolbin är nu en binär volym med värdena 0 och 1 och den bör då se 4

ut som i Fig. 5, där vi också tvingades till lite användarinteraktion. Vi nollställde de lägsta och högsta z-slicearna. Detta gör vi för att undvika att lungorna ska sitta ihop med bakgrunden. Tips: Så här nollställer man slice z =1, 2, 3: ctvolbin(:,:,1:3) = 0; CT, thresholded frontal slice 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 Figur 5: Tröskelsatt CT-volym. Den binära CT-volymen ska nu krympas (erosion). Hur mycket och varför? Se artikeln, avsnitt Method for analysis of inhomogeneities! =0 =1 Figur 6: Strukturelement för krympning (erosion) i 3D. Ett lämpligt strukturelement visas i Fig. 6. Det kan implementeras med koden se = zeros(3,3,3); se1 = [1 1 1; 1 1 1; 1 1 1]; se2 = [0 1 0; 1 1 1; 0 1 0]; se(:,:,1) = se2; se(:,:,2) = se1; se(:,:,3) = se2; 5

Utför nu krympning (erosion) följt av etikettering på den binära CT-volymen. Den bör då se ut som i Fig. 7, där vi använt färgtabellen: colormap(colorcube(32)) CT, labelled frontal slice 0 2 4 6 8 10 0 2 4 6 8 10 Figur 7: Etiketterad CT-bild. Tillverka nu en binär volym med bara lungorna. För att kontrollera att hela den binära lung-volymen ser bra ut kan man göra en frontal projektionen (en slags röntgenbild genom den binära lung-volymen). Den bör då se ut som i Fig. 8. Ledning: Vi fick använda kommandona sum och squeeze. 45 40 35 30 25 20 15 10 5 0 Figur 8: Projektion genom den binära lung-volymen. Visa bilden för läraren - blev läraren nöjd? 6

3.3 Bearbetning av SPECT-volymen Vi ska nu övergå till att bearbeta SPECT-volymen, se Fig. 3. Den är väldigt brusig och därför filtreras den med ett Butterworth-filter. Ekvationen för ett sådant filter är BW(r) = 1 1+(r/D0 ) 2n, r = u 2 + v 2 + w 2, där D 0 är gränsfrekvensen (cut-off frequency). Se artikeln, avsnitt SPECT reconstruction and filtering. Butterworthfiltret har ordningen 3, så 2n =6, men vad är D 0? Vi ska nu konstruera ett sådant butterworth-filter. Till vår hjälp har vi hur man konstruerar ett 3D COS2-filter i MATLAB, COS2(u, v, w) =cos 2 (πuδ) cos 2 (πvδ) cos 2 (πwδ). Det är också plottat i Fig. 9. uaxis = [-N/2:N/2-1]/(N*Delta); [u,v,w] = meshgrid(uaxis,uaxis,uaxis); COS2 = cos(pi*u*delta).^2.* cos(pi*v*delta).^2.*... cos(pi*w*delta).^2; Vektorn uaxis ger indelningen på en koordinataxel. Kommandot meshgrid skapar 3 st volymer, en för u-koordinaten, en för v-koordinaten och en för w-koordinaten. COS2 filter, slice 45 COS2 filter, slice 65 1 1 0.5 0.5 0 0 0.5 0.5 1 1 1 0.5 0 0.5 1 1 0.5 0 0.5 1 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 Figur 9: Ett 3D COS2-filter. 7

Detta COS2-filter har sin noll-genomgång vid den maximala frekvensen 1/2Δ. När det gäller butterworth-filtret måste vi veta samplingsavståndet Δ. Detta kan avläsas i en så kallad header-fil som följer med varje volym. Header-filen heter P4Fd_vent.HDR och den finns inkluderad i Appendix. Patientnamnet är borttaget. Leta i header-filen och ta reda på sampelavståndet Δ i enheten cm! Skapa ett Butterworth-filter och visa det på samma sätt som COS2-filtret visas i Fig. 9. 2D fouriertransform är lätt att generalisera till 3D fouriertransform. Det gäller att F (u, v, w) = f(x, y, z) e j2π(xu+yv+zw) dxdydz. Hur beräknar vi fouriertransform av SPECT-volymen ventvol imatlab med hjälp av kommandona fftn (används i stället för fft2), fftshift och ifftshift? Konsultera Lab2a! Hur filtrerar vi via multiplikation i DFT-domänen? Konsultera Föreläsning 4 eller kompendiet Fig. 3.9. Filtrera nu SPECT-volymen med butterworth-filtret. Resultatet ska se ut som i Fig. 10. filtered SPECT frontal slice 0 100 200 300 400 500 0 100 200 300 400 500 Figur 10: Den Butterworth-filtrerade SPECT-volymen. 8

Låt läraren kontrollera dina två bilder. Blev läraren nöjd? 3.4 Beräkning av mätvärden Det är nu trevligt att kontrollera våra resultat hittills genom att multiplicera den binära lungvolymen som vi erhöll från CT-volymen med den butterworthfiltrerade SPECT-volymen. Resultatet ska bli som i Fig. 11. SPECTlung frontal slice 0 100 200 300 400 500 0 100 200 300 400 500 Figur 11: Den filtrerade SPECT-volymen av enbart lungan. CV, transversal slice CV, frontal slice 0 0.5 1 1.5 2 0 0.5 1 1.5 2 Figur 12: CV-värdet på lungan. 9

Se artikeln, avsnitt Method for analysis of inhomogeneities. Hur stor omgivning i cm 3 används för att beräkna CV-värdet i och vad motsvarar det i antal voxlar? Beräkna nu CV-värden på lungan. Använd omgivningen enligt ovan. Exkludera dock voxlar utanför lungan. Resultatet ska bli som i Fig. 12. Beräkna också ett normerat histogram på CV-värdena. Resultatet ska bli som i Fig. 13. Kontrollera också att det liknar histogrammet för patient P4 i artikeln. Använd matlabkod enligt nedan där lungpos innehåller den binära lungvolymen och lungcv är volymen med CV-beräkningar. binvect = [0:0.01:2]; histo = hist(lungcv(logical(lungpos)), binvect); histo = histo/sum(histo); figure(77) plot(binvect, histo); 0.1 normalized histogram CV 0.09 0.08 0.07 0.06 0.05 0.04 0.03 0.02 0.01 0 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1 1.2 1.4 1.6 1.8 2 Figur 13: CV-histogrammet på lungan. 10

Histogrammets utseende visar tillståndet på patientens lunga. Vad gäller för patient P4? Om man vill ha ett enda mätvärde kan nu gå vidare och beräkna AUC(CV T )-värdet enligt artikeln. Beskriv hur detta beräknas. Vi behöver inte beräkna AUC(CV T )-värdet nu. En titt på histogrammet kan räcka. Låt läraren kontrollera både bilden och histogrammet av CV-värdet. Blev hen nöjd? Gör om hela mätningen för den friska personen H1 (KA1). (Segmenteringen av CT-lungan behöver lite användarinteraktion.) Kontrollera bilden och histogrammet av CV-värdet och visa för läraren. Blev hen nöjd? Som nämdes i introduktionen visade det sig att en av de förmodade friska försökspersonerna hade allergi och gav ett förhöjt mätvärde. Detta har inte varit känt tidigare. Denna person finns inte med i artikeln, men vi har tillgång till patientdata så att vi kan testa metoden även på denna person, som vi kallat KA2. Gör om hela mätningen för denna person. Beskriv hur du kan se att personens histogram och AUC(CV T )-värde avviker från den helt friska personen H1 (KA1). 11

A Appendix A.1 SPECTprog.m 1 % ################################################ 2 % Program for measurements on SPECT and CT-volumes 3 % ################################################ 4 5 % Volume size 6 % =========== 7 N = 128; 8 9 % Read and show CT indata 10 % ======================= 11 fid = fopen( /site/edu/bb/medicinskabilder/spect/p4fd_attma.img, r ); 12 c = fread(fid, uint16 ); 13 ctvol = reshape(c,[n N N]); 14 15 maxv = 350; 16 figure(1) 17 colormap(gray) 18 subplot(1,2,1), imagesc(ctvol(:,:,55) ); 19 axis image, axis off, colorbar( SouthOutside ), caxis([0 maxv]) 20 title( CT, horizontal slice ) 21 subplot(1,2,2), imagesc(squeeze(ctvol(:,75,:)) ); 22 axis image, axis off, colorbar( SouthOutside ), caxis([0 maxv]) 23 title( CT, frontal slice ) 24 25 % Make modified jet colormap 26 % ========================== 27 jetmod = jet; 28 jetmod(1,:) = [1 1 1]; 29 30 % Read and show SPECT indata 31 % ========================== 32 fid = fopen( /site/edu/bb/medicinskabilder/spect/p4fd_vent_ads.10.dat, r ); 33 c = fread(fid, float ); 34 ventvol = reshape(c,[n N N]); 35 36 maxv = 500; 37 figure(2) 38 colormap(jetmod) 39 subplot(1,2,1), imagesc(ventvol(:,:,55) ); 40 axis image, axis off, colorbar( SouthOutside ), caxis([0 maxv]) 41 title( SPECT, horizontal slice ) 42 subplot(1,2,2), imagesc(squeeze(ventvol(:,75,:)) ); 43 axis image, axis off, colorbar( SouthOutside ), caxis([0 maxv]) 44 title( SPECT, frontal slice ) 45 46 % COS2-filter 47 % =========== 48 Delta = 0.345161; %cm 49 uaxis = [-N/2:N/2-1]/(N*Delta); 50 [u,v,w] = meshgrid(uaxis,uaxis,uaxis); 12

51 COS2 = cos(pi*u*delta).^2.* cos(pi*v*delta).^2.*... 52 cos(pi*w*delta).^2; 53 54 figure(3) 55 colormap(jetmod) 56 subplot(1,2,1), imagesc(uaxis, uaxis, real(cos2(:,:,45)) ); 57 axis image, colorbar( SouthOutside ), caxis([0 1]) 58 title( COS2-filter, slice 45 ) 59 subplot(1,2,2), imagesc(uaxis, uaxis, real(cos2(:,:,65)) ); 60 axis image, colorbar( SouthOutside ), caxis([0 1]) 61 title( COS2-filter, slice 65 ) 62 63 % Histogram 64 % ========= 65 binvect = [0:1:250]; 66 ctvect = ctvol(:); 67 histo = hist(ctvect, binvect); 68 69 figure(21) 70 subplot(1,1,1), stem(binvect, histo); 71 title( CT histogram ) 72 axis([1,250,0,50000]) A.2 P4Fd_vent.HDR 1!INTERFILE := 2!imaging modality :=nucmed 3!originating system :=GENIE 4!version of keys :=3.3 5 date of keys :=1992:01:01 6 conversion program :=Genie 7 program author :=Raja.P 8 program version :=1.7 9 program date :=1997:03:05 10!GENERAL DATA := 11 original institution :=US Linköping, Fys NM 12 contact person := 13 data description :=xxgenie:tomo vent xxgenie:tomo vent 14!data offset in bytes :=0 15!name of data file :=P4Fd_vent.IMG 16 patient name :=P4Fd^^^^ 17!patient ID :=P4Fd 18 patient dob :=2012:01:01 19 patient sex :=Unknown 20!study ID :=PMTV 21 exam type :=TOMO 22 data compression :=none 23 data encode :=none 24!GENERAL IMAGE DATA := 25!type of data :=Tomographic 26!total number of images :=120 27 study date :=2012:04:17 28 study time :=13:47:55 13

29 imagedata byte order :=LITTLEENDIAN 30 number of energy windows :=1 31 energy window [1] :=Tc99m 32 energy window lower level [1] :=129.93 33 energy window upper level [1] :=154.07 34 flood corrected :=N 35 decay corrected :=N 36!SPECT STUDY (general) := 37 number of detector heads :=1 38!number of images/energy window :=120 39!process status :=Acquired 40!matrix size [1] :=128 41!matrix size [2] :=128 42!number format :=unsigned integer 43!number of bytes per pixel :=2 44 scaling factor (mm/pixel) [1] :=3.45161 45 scaling factor (mm/pixel) [2] :=3.45161 46!number of projections :=120 47!extent of rotation :=360 48!time per projection (sec) :=20 49 study duration (sec) :=2400 50!maximum pixel count :=106 51 patient orientation :=feet_in 52 patient rotation :=supine 53!SPECT STUDY (acquired data) := 54!direction of rotation :=CW 55 start angle :=-90 56 first projection angle in data set :=90 57 acquisition mode :=stepped 58 Centre_of_rotation :=Single_value 59!X_offset :=0 60 Y_offset :=0 61 Radius :=0 62 orbit :=Circular 63 preprocessed := 64!END OF INTERFILE := 14