/LGM. Amplifiering och analys av humant mitokondrie-dna med hjälp av PCR teknik och agarosgelelektrofores

Relevanta dokument
Tillämpning av olika molekylärbiologiska verktyg för kloning av en gen

Linköpings Universitet. Laboration i genteknik

Tillämpning av olika molekylärbiologiska verktyg för kloning av en gen

TFKE32/TFKI09/9KEA21. Laboration i Genteknik

Linköpings Universitet. Lägesspecifik Mutagenes av proteiner

Mångfaldigande av mänskligt mitokondrie-dna

Linköpings Universitet. Lägesspecifik mutagenes av proteiner

LAB 12. Preparation och analys av plasmid-dna från E.coli

DNA-labb / Plasmidlabb

Laboration v.40 Detektion av Legionella pneumophilia med nestad PCR

Laboration DNA. Datum:16/11 20/ Labgrupp: 11 Laboranter: Johanna Olsson & Kent Johansson

Polymerase Chain Reaction

C V C. Bruksanvisning till Biofortuna SSPGo TM HLA Wipe Test BF Revision 3. Juli 2014

Genkloning och PCR av tetracyklinresistensgen. från pacyc184 till puc19

Expression, produktion och rening av Fatty acid binding protein (FABP) från ökenmyran Cataglyphis fortis

Preparation av hemoglobin med hjälp av gelfiltrering

Laboratoriemetod för att manuellt rena DNA från ett prov på 0,5 ml

Preparation och spektroskopisk karakterisering av Myoglobin

Kopiera DNA med hjälp av PCR-metoden. Niklas Dahrén

DNA-analyser: Introduktion till DNA-analys med PCR och gelelektrofores. Niklas Dahrén

JANINA WARENHOLT Molekylär patologi LUND

Institutionen för laboratoriemedicin Bilaga 2 Biomedicinska analytikerprogrammet Analytisk Kemi och Biokemisk metodik Ht 2010, Termin 3

Genkloning och PCR av tetracyklinresistensgen från pacyc184

Cirkulerande cellfritt DNA

ChromoQuant In vitro diagnostiskt test kit för analys av vanligen förekommande aneuploidier i kromosomerna 13, 18 och 21 samt i X och Y.

ChromoQuant In vitro diagnostiskt test kit för analys av vanligen förekommande aneuploidier i kromosomerna 13, 18 och 21 samt i X och Y.

UTVECKLING AV EN PCR METOD FÖR IDENTIFIERING AV NYUPPTÄCKTA MJÖLKSYRABAKTERIER

Mitokondriella sjukdomar. Gittan Kollberg Avd för klinisk kemi Sahlgrenska Sjukhuset Göteborg

Isolering och rening av proteinet tiopurinmetyltransferas

BIMA15 HT Säkerhetsföreskrifter och kompletterande laborationer 1

Bruksanvisning till Biofortuna SSPGo TM HLA Typing Kits. CE revision 5, januari 2014

Laborationer i Cellbiologi med biokemi Lab 6-10


DNA-LABORATION Southern blot / PCR

LAB 11 STUDIER AV TEMPERATUR OCH

DNA-ordlista. Amplifiera: Att kopiera och på så sätt mångfaldiga en DNA-sekvens med hjälp av PCR.

Datum Skrivtid 4 tim. Charlotte Sahlberg Bang

Titrera. Pär Leijonhufvud

HLA SSP Kits. Kit klart för användning med SSP reagens för DNA baserad HLA typning. [IVD] For In Vitro Diagnostic Use

Tentamen i Cellbiologi med Biokemi

IDENTIFIERING AV 13 NYA MJÖLKSYRA- BAKTERIER MED DHPLC

30. Undersökning av aminosyror i surkål

RAPD-PCR för storskalig typning av Bacillus cereus

Laboration om cellskada och manipulering av cellers känslighet för stress

Sverigefinal EUSO 2018: Biologi

CELLODLINGSHANDLEDNING

Cellcykel/Celldöd. Laborationsrapport 20/2-14. Basgrupp 1

GRÅÄRTERS BLOMNING - En studie i hur geografiskt ursprung påverkar den genetiska variationen

Tentamen i Biomedicinsk laboratorievetenskap A, 7,5 hp

Separation av plasmaproteiner med elektrofores, HYDRAGEL PROTEIN(E) K20

Western blot. BMA-09, VT-11, Termin 4. Ylva Hedberg Fransson

Centrum för genetisk identifiering Fisk, kräftor och musslor som edna metod och fältprover

REGISTER. Experiment. Experiment 1 Super såpbubblor. Material som ingår i satsen.

Patientguide. Enkla tips för ett fräscht leende

OBS! Under rubriken lärares namn på gröna omslaget ange istället skrivningsområde, ex Lösningsberedning. Totalt ska ni använda 9 gröna omslag.

Förordning nr 765/2002, benfria styckningsdelar av nötkött, exportbidrag [2241]

Introduktion till laboration Biokemi 1

Provmaterial, Perifert blod 2 heparinrör med blod för vitalfrysning av tumörceller respektive preparation/infrysning av RNA-DNA.

Påvisande av Echinococcus multilocularis med specifikt fiske av mitokondrie-dna

Skötsel och rengöringsanvisning

Rapport avseende DNA-analys av spillningsprover från järv och lo

Laborationshandledning, Njurfunktion Termin 3, läkarprogrammet

BMP-test Samrötning av pressaft med flytgödsel. AMPTS-försök nr 2. Sammanfattning

Undersökning av växternas evolution

HANDSTYCKE PIEZOTOME: SUPRASSON/NEWTRON/NEWTRON LED

Rekommenderas för cykelvasan 90 km

Protokoll för fördesinficering/manuell rengöring och sterilisering av insatser och filar från SATELEC

MycXtra Fungal DNA Extraction Kit


VITARE TÄNDER. FAKTA OM NYA iwhite INSTANT

Övningsuppgifter Syror och baser

3. Vilka livsmedel innehåller reducerande sockerarter?

PROVTAGNINGSFÖRFARANDE VID BESTÄMNING AV SALIVENS SEKRETIONSHASTIGHET, BUFFRINGSKAPACITET,

MYKOBAKTERIER INFORMATION

ProbeTec ET Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae Amplified DNA Assays

Cellskada och manipulering av cellers känslighet för stress

BIMA12/13 ht 2012, Introduktionslab. 1. Teoretisk introduktion till laborativt arbete

Dokumentnamn PM leukemier Utfärdare Martin Höglund/Kerstin Hamberg. Version 2.0. Granskare Leukemi-Lymfom diagnosgrupp.

Leucosep-rör LTK.615 BIPACKSEDEL. För in vitro-diagnostik PI-LT.615-SE-V3

ProbeTec ET Chlamydia trachomatis Amplified DNA Assay

Cellodling Laborationskompendium

DRAFTLINE - RENGÖRING AV ÖLANLÄGGNING

NYCKLAR: Protokoll för fördesinficering/manuell rengöring och sterilisering av SATELEC-nycklar

I vår natur finns det mängder av ämnen. Det finns några ämnen som vi kallar grundämnen. Grundämnen är uppbyggda av likadana atomer.

Driv en miniräknare med... Spenat. Blåbär. Skolcellslådan: Labbhandledning

Kemisk tipsrunda. Så trodde vi innan experimentet. Station 1 X 2 Hypotes 1

Laborationshandledning i galenisk farmaci

Ladokkod: TK151C Tentamen ges för: Bt3. Namn: Person nummer: Tentamensdatum: 17/ Tid: 09:00-13:00. Hjälpmedel

TIPS OCH RÅD FÖR EN REN OCH GLAD MUN!

Isolering av Eugenol

Bruksanvisning för SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD

Friskbladet Vårkänslor och kyssveckor Tandvårdstugget vad betyder det? Tandtråden tändernas bäste vän

FACIT TILL FINALEN GRUNDBOK

MYKOBAKTERIER INDIKATION

Tandhälsa för små barn

Detektion av Streptococcus agalactiae (GBS) från selektiv odlingsbuljong med MALDI-TOF och illumigene

Gjuta egna mjukbeten Så jag skulle inte rekommendera att använda spisen Innan gjutning

Etylacetat är lättantändligt, ingen öppen låga eller elplatta i närheten.

Instruktioner. CL17förkalibreringochverifikationavfriochbundenklor. Anvisningar för användningen

Riskbedömning avdelningen för Evolutionsbiologi Uppsala Universitet, EBC Norbyvägen 18 D, Uppsala

Transkript:

2008-01-18/LGM Amplifiering och analys av humant mitokondrie-dna med hjälp av PCR teknik och agarosgelelektrofores

Syfte: Med två olika DNA extraktionsmetoder försöka få fram tillräckligt mycket celler från kindens insida för att kunna amplifiera mitokondrie DNA med hjälp av PCR teknik och analys med agarosgelelektrofores. Er uppgift blir att arbeta fram en metod för detta mha er labhandledare. Inför planeringen: Lägg upp en tidsplan för arbetet Vem gör vad i gruppen? Vilka kontrollförsök ska vara med i de olika stegen? Vilka lösningar behövs Under arbetets gång, glöm inte att föra noggranna anteckningar vad ni gör att använda vid redovisning och rapportskrivande. Metod 1: DNA Preparation DNA preparation med skrap från kindens insida med borste 1) Tillsätt 600 l 50 mm NaOH till ett skruvlocksrör 2) Tag fram en borste och håll den enbart i skaftet för att undvika kontaminering 3) Borsta och skrapa kindens insida i 30 sekunder, Ta i men inte för hårt så det börjar blöda!! 4) Sätt ner borsten i skruvlocksröret och klipp av borsten så att de får plats i röret, vortexa röret ett par sekunder 5) Sätt röret i ett inkubationsblock, 95 C i 10 min 6) Vortexa ytterligare ett par sekunder 7) Ta försiktigt upp borsten med en pincett och kasta den 8) Neutralisera lösningen genom att tillsätta 50 l 1M Tris-HCl, ph 8.0. Blanda lösningen genom att vända röret ett par gånger.

Metod II: DNA preparation sköljning med isoton sportdryck 1) Skölj munnen under ca 1-1,5 minut med 3-5 ml isoton sportdryck. Skrapa försiktigt loss celler från munnens insida med hjälp av tänderna medan du sköljer. 2) Spotta ut drycken med saliv och munceller i en engångsmugg 3) Mät upp 1 ml av drycken med hjälp av en automatpipett och för över detta till ett epp.rör. Var noga med att du får med celler från muggens botten och undvik att få med skum från saliven. 4) Centrifugera lösningen 5 minuter 13000 rpm i en bordscentrifug. 5) Häll bort supernatanten, gör detta med en snärt. Finns det någon pellet? om inte, har du förmodligen fått för lite celler, upprepa då moment 3 och 4 för att få mera celler 6) Låt röret stå upp och nedvänt på en Kleenex för att rinna av. 7) Tillsätt 0.5 ml Chelex (eller motsvarande) blandning för att adsorbera föroreningar som kan störa PCR reaktionen. Blanda med vortex. 8) Sätt röret i ett kokande vattenbad i 10 minuter för att lysera cellerna 9) Tag upp röret och centrifugera under 1minut 13000 rpm. Chelex kulor (eller motsvarande), celldelar hamnar på botten medan mitokondrie-dna:t blir kvar i supernatanten. 10) För över l av supernatanten i ett rent epp. rör för att användas för nästa steg dvs amplifiering. Om provet inte ska användas direkt så kan det frysas i detta steg.

Frågeställningar/funderingar: PCR amplifiering Utgående från primersekvensen, ge förslag på lämplig PCR cykel Vad händer om annealingtemperaturen är för hög respektive för låg? Hur beräknas smältpunkten för primers? Vad bör man tänka på vid design av primers? Vilka kontroller är lämpliga att ha med? Tillsätt nedanstående i ett PCR rör till totalvolymen 20 l. Gör upp inom labskiftet olika försöksserier. Sterilt H 2 O X l Primer_forward 1-5 l Primer_reverse 1-5 l 2mM dntp 2 l 10 X PCR buffert 2 l Taq Polymerase 1 l DNA 1-5 l 20 l

Agarosgelelektrofores Frågeställningar/funderingar: Vilka kontroller bör vara med vid elektroforesen Vad händer om du har för låg respektive för hög spänning vid elektroforesen? Vilken koncentration på agarosgelen ska du använda? När är elektroforesen klar? Hur ska du detektera DNA:t? Gjutning av agarosgel 1. I en 250 ml flaska väg upp 0.5-2.0 g agaros, tillsätt 10 ml 10 XTBE buffert och späd till totalvolymen 100 ml. 2. Värm agarosgelen i en mikrovågsugn tills den är helt flytande. Låt blandningen svalna en stund och gjut sedan agarosgelen. Låt gelen svalna minst 30 minuter. Elektroforetisk separation av DNA 1. Lägg agarosgelen i elektroforesapparaten och fyll på med 1 x TBE buffert så att det täcker gelen. 2. Blanda 4 l laddningsbuffert med DNA och H 2 O till totalvolymen 20 l, glöm inte kontroll! 3. Applicera sakta och försiktigt proverna i provbrunnarna med en automatpipett 4. Separera DNA fragmenten genom att lägga på en spänning på ~100 volt. Kom ihåg att DNA är negativt laddat 5. Färga in gelen med Etidiumbromid i ~15 minuter 6. Fotografera av gelen och analysera resultatet

Referenser Appendix Primer_forward 5 -TTAACTCCACCATTAGCACC-3 Primer reverse 5 -GAGGATGGTGGTCAAGGGAC-3