Centrum för genetisk identifiering Teknisk rapport Björnspillningsinventering 2015

Relevanta dokument
Centrum för genetisk identifiering Teknisk rapport Björnspillningsinventering 2015

Centrum för genetisk identifiering Teknisk rapport Björnspillningsinventering 2016

Centrum för genetisk identifiering Teknisk rapport Björnspillningsinventering 2017

Spillningsinventering av björn i Norrbottens län 2016

Spillningsinventering av björn i Jämtlands och Västernorrlands län 2015

Spillningsinventering av björn i Dalarnas, Gävleborgs och Värmlands län 2017

Rapport avseende DNA-analys av spillningsprover från järv och lo

Björnstammens storlek i Jämtlands och Västernorrlands län 2015

Björnstammens storlek i Norrbottens län 2016

Polymerase Chain Reaction

Björnstammens storlek i Västerbotten 2014

Centrum för genetisk identifiering Fisk, kräftor och musslor som edna metod och fältprover

Björnstammens storlek i Sverige 2017

Björnstammens storlek i Sverige 2013 länsvisa skattningar och trender

Beräkning av björnstammens storlek i Norrbotten 2010

Björnstammens storlek i Sverige 2008 länsvisa uppskattningar och trender Rapport från det Skandinaviska björnprojektet

Beräkning av björnstammens storlek i Västerbotten Rapport från det Skandinaviska Björnprojektet Jonas Kindberg och Jon E Swenson

Tillämpning av olika molekylärbiologiska verktyg för kloning av en gen

BJÖRNSPILLNING. - insamling till DNA-analyser

FAKTABLAD Genetiskt provinsamling i rovdjursinventeringen

Aktuell forskning om björn

JANINA WARENHOLT Molekylär patologi LUND

Urin-DNA från varg utvärdering av användbarhet och analysframgång

Spillningsinventering av björn i Västerbottens län 2009

Resultat från inventeringar av björn i Sverige 2005 Sammanställning från Rovdjursforum

VARGAR OCH DNA ANALYS

Uttern i Sverige Genetisk studie av vävnadsprover och spillning från uttrar i Västernorrland och Småland

Genetisk studie av uttrar

INVENTERING STORA ROVDJUR

Laboration v.40 Detektion av Legionella pneumophilia med nestad PCR

INVENTERING STORA ROVDJUR

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2017

DNA-analys av spillning NRM

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2011 Mikael Åkesson Grimsö forskningsstation

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2010 Mikael Åkesson Grimsö forskningsstation

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2013 Mikael Åkesson Grimsö forskningsstation

Cirkulerande cellfritt DNA

Molekylärbiologisk diagnostik av tarmparasiter

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2012

VARG: Instruktion för fastställande av förekomst (familjegrupp, revirmarkerande par och föryngring)

INVENTERING STORA ROVDJUR

ROVBASE. Manual Registrera observation. Version

Fisk, kräftor & musslor som edna Patrik Bohman, SLU Aqua Sötvattenslaboratoriet

DNA-ordlista. Amplifiera: Att kopiera och på så sätt mångfaldiga en DNA-sekvens med hjälp av PCR.

Rapport avseende DNA-analys av spillningsprover från järv


ChromoQuant In vitro diagnostiskt test kit för analys av vanligen förekommande aneuploidier i kromosomerna 13, 18 och 21 samt i X och Y.

Syfte? Naturliga populationer i Trollsvattnen. Otoliter för åldersbestämning. Vävnadsprover för genetisk analys

FAKTABLAD Allmänhetens observationer av stora rovdjur

Sammanställning av fällda vargar från licensjakten 2015

DNA-ordlista. 16S: Egentligen 16S rrna. Mitokondriell gen med förhållandevis liten variation som ofta används för att artbestämma DNA från däggdjur.

Jaktens inverkan på björnstammen i Norrbottens län. Jonas Kindberg och Jon E Swenson Skandinaviska björnprojektet Rapport 2013:2

Licensjakt varg DNA-analyser och inventeringsdata.

Retrospektiva studier av perfluoralkylsulfonsyror i den svenska miljön Andra och avslutande året av screeningundersökningen.

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2008

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2006

Slutrapport - Förstudie om Alternariaförekomst i potatis och behandlingseffekter 2013 i Mellansverige.

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2004

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2007

Version 1.0 Utgivningsdatum Förändring

INVENTERING STORA ROVDJUR

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2016

Framtida tekniker MLPA (Multiplex Ligation Probe Amplification) med tillämpning inom Talassemi. Dick Nelson Klinisk kemi, Labmedicin Skåne

Flodpärlmusslan i Blekinge

FAKTABLAD VARG Inventering av varg på barmark

INVENTERING STORA ROVDJUR

INVENTERING STORA ROVDJUR

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2005

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2006

Effektivisering av urvalsprocesser vid analysering av björnspillning

Familjär hyperkolesterolemi med NGS-analys

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2012

ROVBASE. Manual Gruppera i Rovbase. Version

Inventering av stora rovdjur i Örebro län

Erfarenheter från övergången till den nya typningsmetodiken MIRU-VNTR

Kortfakta om rovdjursinventeringarna

Bevarande och uthålligt nyttjande av en hotad art: flodkräftan i Sverige

Beräkning av björnstammens storlek i Värmland, Dalarnas och Gävleborgs län

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2009

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2010

Realtids-PCR. icycler BioRad, mikrotiterplattor. LightCycler Roche, kapillärer. ABI Prism 7000 Applied Biosystem mikrotiterplattor

Instruktion extra inventering varg vintern

Resultat från inventeringar av järv i Sverige 2012

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2004

Sample to Insight. VirusBlood200_V5_DSP-protokoll. December 2017 QIAsymphony SP -protokollblad

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2011

BJÖRN Övervakningsprogrammet i Skandinavien

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2005

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2013

Resultat från inventering av järv i Sverige vintern 2012/2013

Datorlaboration 5: Genetisk populationsstruktur

INVENTERING STORA ROVDJUR

INVENTERING STORA ROVDJUR

Skrivning för biolog- och molekylärbiologlinjen, genetik 5p.

Överlämnande av rätt att besluta om skydds- och licensjakt efter björn till länsstyrelserna i Mellersta rovdjursförvaltningsområdet

MSB PROJEKT: MOBIL RESURS VID MISSTÄNKT FARLIG SMITTA. Tobias Lilja

Rovbase. Manual till dokumentation av järvinventeringen Version 5.0. Sidan 1 av 18

Märkning av odlad lax är DNA ett alternativ? Stefan Palm, Sötvattenslaboratoriet, SLU Aqua Nationellt smoltkompensationsseminarium

Teknisk rapport över genetiska analyser på varg i Sverige år 2015

Resultat från inventeringar av kungsörn i Sverige 2009

Transkript:

RAPPORT Datum Dnr 1(7) 2017-11-07 4.1-628-2015 Centrum för genetisk identifiering Teknisk rapport Björnspillningsinventering 2015 Postadress: Besöksadress: Telefon: 08-519 540 00 Box 50007 Frescativägen 40 Telefax. 08-519 540 85 104 05 Stockholm 114 18 Stockholm registrator@nrm.se

2(7) Sammanfattning För genetisk analys av spillningsinventering av björn 2015 i Jämtland och Västernorrlands län har samma metodik använts som vid tidigare björnspillningsinventeringar i Sverige och Norge. Det innebär samma antal markörer och identiska markörer; små skillnader i protokoll kan dock förekomma. Ett större antal prover än förväntat har processats. Proverna har mottagits från Viltskadecenter (VSC). Proverna har genotypats på (NRM) och matchats mot den norska databasen vid NIBIO och den franska databasen vid LECA. Resultaten har importerats till Rovbase. Spillningsprover och DNA-extrakt lagras vid NRM och är open access. Totalt har 5951 prover levererats och registrerats. Antal prover som har analyserats och importerats till Rovbase är 5876 stycken. Skillnaden är ett antal prover som levererats för kvalitetssäkring, men inte importerats till Rovbase. Antalet konstaterade individer för båda länen är 1021 stycken. Mer än dubbelt så många individer hittades i Jämtlands län jämfört med Västernorrlands län. Andelen prover med björn-dna är 79,7 % och andelen individbestämda prover är 73,7 %.

3(7) Metodik Registrering av prover Alla inkomna prover har skannats och getts ett unikt labnummer. De skannade streckkoderna och tillhörande labnummer har sparats i en lokal databas. Totalt innehåller databasen 5951 poster. Antalet prover som har analyserats och importerats till Rovbase är 5876 stycken (bilaga 1). Skillnaden är ett antal prover som levererats för kvalitetssäkring, men inte importerats till Rovbase. Provtagning Från varje inkommet prov provtogs ca 200 mg spillning. Spillningsprovet lades i InhibitEXbuffert (Qiagen) tills vidare analys. Resterande delen av provet har lagrats i Miljöprovbanken. Proven kommer att sparas till nästa omdrev eller som längst i 10 år. Extraktion av DNA DNA-extraktion har skett i laboratorium dedikerat för analys av degraderade prover. Prover har extraherats i batcher om 23 st plus ett blankprov. Blankprov har inkluderats för att möjliggöra spårbarhet. Spårbarhet är viktig för att spåra eventuell kontamination eller andra oregelbundenheter som kräver utredning. Prover har extraherats med QiAampâ Fast DNA Stool Mini kit (Qiagen) enligt tillverkarens instruktioner. Screening Alla inkomna prover har screenats för förekomst av björn-dna. Den artspecifika markören MU51 har körts tillsammans med könsbestämningsmarkören SE47/R143_modif (tabell 1). F är forward-primer och R är reverse-primer. Primrar avgränsar det fragment som ska amplifieras. Den ursprungliga primern R143 för könsbestämning gav ganska mycket bakgrundssignal som störde analysen. En något modifierat version (R143_modif) utvecklades och fungerade tillfredsställande. Tabell 1. Detaljer om primrar som använts vid screening. Namn Sekvens (5 till 3 ) Inmärkning Kommentar MU51_F GCCAGAATCCTAAGAGACCT 6FAM Specifik för björn MU51_R GTTTCTTGAAAGGTTAGATGGAAGAGATG Specifik för björn SE47 CAGCCAAACCTCCCTCTGC PET Könsbestämning R143 AGGTGGCTGTGGCGGCA Könsbestämning, ursprunglig reverse-primer R143_modif AGGTGGCTGTGGTGGCAG Könsbestämning, ny reverseprimer Genotypning Metodik för genotypning följer till stora delar Andreassen et al (2012). Åtta autosomala mikrosatellit-loci har använts i analysen. Dessa är MU05, MU09, MU10, MU23, MU50, MU51, MU59 och G10L. Loci har PCR-amplifierats i två tetraplexer (tabell 2), vilket innebär att de åtta mikrosatellit-loci delats upp i två grupper med fyra loci (tetraplex) i varje grupp.

4(7) Qiagen Multiplex PCR â kit har använts för amplifiering enligt tillverkarens instruktioner. Varje PCR har gjorts i 10 µl-volymer och innehållit 5 µl Mastermix, 1 µl primermix, 2 µl H 2 O och 2 µl templat. Primermixer (tetraplex 1 och tetraplex 1 (tabell 2)) har innehållit tetraplex 1, MU09_F/R 0,2 µm, MU10_F/R 0,1 µm, MU23_F/R 0,08 µm, MU05_F/R 0,1 µm, tetraplex 2. MU50_F/R 0,2 µm, MU51_F/R 0,1 µm, G10L_F/R 0,08 µm, MU59_F/R 0,8 µm. PCR-cykel har varit: Steg 1 Initial denaturering 95 C 15 mins Steg 2 Denaturering 94 C 30 sec Steg 3 Annealing 58 C 1 min 30 sec Steg 4 Extension 72 C 1 min Steg 5 Till steg 2, totalt 35 cykler Steg 6 Extension 60 C 30 mins Tabell 2. Detaljer om primrar som använts vid genotypning. Namn Sekvens (5 till 3 ) Inmärkning Kommentar G10L_F CAGGACAGGATATTGACATTGA VIC Tetraplex 2 G10L_R GATACAGAAACCTACCCATGCG MU10_F TTCAGATTTCATCAGTTTGAC VIC Tetraplex 1 MU10_R TTTGTATCTTGGTTGTCAGC MU23_F GCCTGTGTGCTATTTTATCC NED Tetraplex 1 MU23_R GTTTCTTTTGCTTGCCTAGACCACC MU51_F GCCAGAATCCTAAGAGACCT 6FAM Tetraplex 2 MU51_R GTTTCTTGAAAGGTTAGATGGAAGAGATG MU59_F GCTGCTTTGGGACATTGTAA 6FAM Tetraplex 2 MU59_R GTTTCTTCAATCAGGCATGGGGAAGAA MU50_F GTCTCTGTCATTTCCCCATC PET Tetraplex 2 MU50_R GAGCAGGAAACATGTAAGATG MU05_F ATGTGGATACAGTGGAATAGACC NED Tetraplex 1 MU05_R GTTTCTTGTGACATGAACTGAAACTTGTTAT MU09_F GCCAGCATGTGGGTATATGTGT 6FAM Tetraplex 1 MU09_R GTTTCTTAGCAGCATATTTTTGGCTTTGAAT Resultat och diskussion Deskriptiv statistik Deskriptiv statistik för populationen har gjorts med mjukvaran GenAlEx 6.5 (Peakall and Smouse, 2012). Tre individbestämda prover SEP0040754, SEP0040757 och SEP0049346 som är insamlade i Västerbotten finns med bland de analyserade proverna. Av 5876 analyserade prover konstaterades björn-dna i 4684 prover (79,7 %) (tabell 3). Det erhölls individbestämda genotypdata för 4330 prover (73,7 %). För 354 prover som innehöll björn-dna gick det inte att få fram en genetisk profil. Anledningen är dålig DNA-kvalitet.

5(7) För 1192 prover (20,3 %) kunde inte björn-dna detekteras. Anledningar till detta är främst att spillningen inte kommer från björn eller att DNA i provet var alltför degraderat för analys. Antalet unika björnar var 1021 stycken (tabell 4). Tabell 3. Björnspillningsprover från Jämtlands och Västernorrlands län 2015. Även från Västerbotten kom det in åtta prover vilka togs med i analyserna. Totalantalet individer stämmer inte med summan av de enskilda länen, eftersom drygt 60 individer påträffades i flera län. Totalt Jämtland Västernorrland Västerbotten Antal prover 5876 4102 1766 8 Antal insamlare ca 2 700 1800 900 6 Prover med björn- 4684 3264 1412 8 DNA Individbestämda 4330 3015 1312 3 prover Prov utan björn- 1192 838 354 0 DNA Av de inskickade proverna % prover med 79,7 79,6 80,0 100 björn-dna % prover individbestämda 73,7 73,5 74,3 37,5 Tabell 4. Individbestämda prover separerade på kön och län. Även från Västerbotten kom det in några prover. Totalantalet individer stämmer inte med summan av de enskilda länen, eftersom drygt 60 individer påträffades i flera län. Båda länen Jämtland Västernorrland Västerbotten Konstaterade 1021 778 305 3 individer Individer som 135 107 36 1 redan var kända Antal honor 582 455 152 2 Antal hanar 435 320 152 1 Antal okända kön 4 3 1 0 Könskvot ( / ) 1:1,34 1:1,42 1:1 1:2 Högsta återfynd 33 33 31 1 Prov per hona 3,9 3,7 3,6 1 Prov per hane 4,8 4,1 5,0 1 Prov per individ 4,2 3,9 4,3 1 Totalt innehöll datasetet 1021 unika björnindivider (tabell 4). Antalet alleler för de olika loci varierade mellan 6 och 10 och observerad heterozygoti mellan 0,634 och 0,822. Heterozygotivärdena är i paritet eller något högre än de som rapporterats tidigare för svenska björnar (Andreassen et al., 2012). Den förväntade heterozygotin är något högre än den observerade, men skillnaderna är små, vilket innebär att det inte finns anledning att tro att parningsstrukturen avviker från slumpmässig parning.

6(7) Tabell 5. Deskriptiv statistik för de åtta mikrosatellit-loci där N är antal prover, Na är antal olika alleler, Ho är observerad heterozygoti och He är förväntad heterozygoti. MU05 MU09 MU10 MU23 MU50 MU51 MU59 G10L! ± SE N 1014 1007 1009 1009 1010 1001 1012 1002 1008±1,604 Na 10 10 6 9 7 11 7 8 8,500±0,627 Ho 0,816 0,732 0,634 0,792 0,793 0,789 0,735 0,799 0,761±0,021 He 0,822 0,773 0,680 0,799 0,791 0,809 0,750 0,816 0,780±0,017 De prover som gick att genotypa för 6 8 loci har använts för individbestämning. Prover där 1 5 loci har gett resultat har bedömts som björn, men ej använts för individbestämning. Tabell 6 visar sannolikheter för att individer har samma genotyp och tabell 7 visar sannolikheter för att syskon har samma genotyp. Figur 1 är antal matchande mot unika genotyper för ökande antal loci vilket visar att minst 6 loci för individbestämning räcker för att detektera unika genotyper. Tabell 6. Sannolikhet att två individer har samma genotyp för ökande antal loci. Antal loci 1 1+2 1+2+3 1+2+3+4 1+2+3..5 1+2+3..6 1+2+3..7 1+2+3..8 5,3E-02 4,2E-03 6,3E-04 4,2E-05 3,1E-06 1,9E-07 1,7E-08 1,0E-09 Tabell 7. Sannolikhet att syskon har samma genotyp för ökande antal loci. Antal loci 1 1+2 1+2+3 1+2+3+4 1+2+3..5 1+2+3..6 1+2+3..7 1+2+3..8 3,5E-01 1,3E-01 6,0E-02 2,2E-02 8,3E-03 3,0E-03 1,2E-03 4,2E-04 Antal matchande versus unika genotyper per locus ANTAL 1500 1000 500 0 LOCUS KOMBINATION # med matchande genotyp # unik genotyp Figur 1. Antal matchande genotyper för ökande antal loci och antal unika genotyper för ökande antal loci.

7(7) Återfynd Det högsta antalet återfynd av en björnindivid är 33 st (tabell 4). Antalet återfynd per individ separerat på län varierar mellan 3,6 och 5,0. För populationsberäkningar är det önskvärt med en återfyndsfrekvens över 3. Återfyndsfrekvensen är något högre för Västernorrland jämfört med Jämtland. Generellt är återfyndsfrekvensen högre för honor. Könskvot Könskvoten för länen sammantagna var skev med ett överskott av honor (tabell 4). Separerat på län var könskvoten jämn för Västernorrland, men visade på ett överskott av honor i Jämtland. Ett överskott av honor är i linje med en högre återfyndsfrekvens för honor. Import till Rovbase Totalt har 5876 poster importerats till Rovbase (bilaga 1). Matchning Matchning av unika genotyper mot den norska databasen hos NIBIO och den franska databasen hos LECA gav 135 träffar på björnar som tidigare analyserats (bilaga 2). Som exempel kan nämnas björnen W1318, som är en märkt björn från det Skandinaviska björnprojektet. Lagring Spillningsproverna lagras frysta (-20ºC) till dess nästa björnspillningsinventering genomförs i Jämtland och Västernorrland eller som längst i 10 år. DNA-extrakt av spillningarna bevaras frysta (-20ºC) och samlingsförs hos. Varje DNA-extrakt har ett accessionsnummer, se kolumn L i bilaga 1. Resultat av genotypning sparas i en lokal databas hos. Prover och data är open access vilket innebär att provmaterial och data lämnas ut efter ansökan och när beställaren (Naturvårdsverket) informerats. Niclas Gyllenstrand Intendent Referenser Andreassen, R., Schregel, J., Kopatz, A., Tobiassen, C., Knappskog, P. M., Hagen, S. B., Kleven, O., Schneider, M., Kojola, I., Aspi, J., Rykov, A., Tirronen, K. F., Danilov, P. I. and Eiken, H. G. (2012) A forensic DNA profiling system for Northern European brown bears (Ursus arctos), Forensic Science International: Genetics. Elsevier Ireland Ltd, 6(6), pp. 798 809. doi: 10.1016/j.fsigen.2012.03.002. Peakall, R. and Smouse, P. E. (2012) GenAlEx 6. 5 : genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research an update, 28(19), pp. 2537 2539. doi: 10.1093/bioinformatics/bts460.